Aktin yeniden modelleme - Actin remodeling

Aktin yeniden modelleme biyokimyasal dinamik değişikliklere izin veren süreç hücresel organizasyon. Yeniden şekillenmesi Aktin filamentleri hücre yüzeylerinde döngüsel bir düzende oluşur ve hücresel yaşamın temel bir yönü olarak var olur. Yeniden modelleme işlemi sırasında aktin monomerler polimerleştirmek çevresel ipuçlarından kaynaklanan sinyal olaylarına yanıt olarak.[1] Hücreler Sinyal yolları aktin hücre içi organizasyonunu etkilemesine neden olur hücre iskeleti ve genellikle sonuç olarak hücre zarı. Yine çevresel koşulların tetiklediği aktin filamentler, monomerlere dönüşür ve döngü tamamlanır. Aktin bağlayıcı proteinler (ABP'ler), aktin yeniden modelleme süreci boyunca aktin filamanlarının dönüşümüne yardımcı olur.[1] Bu proteinler, çeşitli yapı ve şekil değişikliklerini hesaba katar. Ökaryotik hücreler. Karmaşıklığına rağmen, aktin yeniden şekillenmesi, bir dakikadan kısa bir süre içinde tam bir hücre iskeletinin yeniden düzenlenmesine neden olabilir.[2]

Aktin yapısal bileşimi

G-aktini F-aktine dönüştürmek için polimerizasyon mekanizmasını tasvir eden ince filaman oluşumu; ATP'nin hidrolizine dikkat edin.

Aktin, tüm Eukarya'da en bol bulunan proteinlerden biri olmaya devam etmektedir ve enzim (ATPase ) yavaş yavaş hidrolizler ATP. Ökaryotik hücrelerde iki şekilde bulunur: küresel veya G-aktin ve filaman / filamentli veya F-aktin. Küresel aktin, proteinin monomerik formudur, ipliksi aktin ise doğrusaldır. polimer küresel alt birimler. İpliksi aktin montajı, zayıflığın bir sonucu olarak ortaya çıkar, kovalent olmayan etkileşimler G-aktin arasında ve iki sarmallı asimetrik sarmal bir polimerin düzenlemesinde görülür.[2]

F-aktinin asimetrik doğası, her bir uçta farklı bağlanma özgüllüklerine izin verir. Bir aktin alt birimini açığa çıkaran terminal ATP bağlama sitesi genellikle "(-) uç" olarak etiketlenir. Oysa polimerin bir yarık sunan ve serbest bir ATP bağlanma bölgesinden yoksun olan karşı ucu "(+) uç" olarak adlandırılır.[2] Ek olarak, aktin ilgili uçları mikrofilament genellikle aşağıdaki görünümleriyle belirtilir transmisyon elektron mikroskobu "süsleme" olarak bilinen bir teknik sırasında miyozin her uçta farklı aktin-miyozin bağlanmasına neden olur. "Sivri uç" ve "dikenli uç" terimleri sırasıyla "(-) uç" ve "(+) uç" anlamına gelir.[3]

Hücre içinde, G-aktin ve F-aktin konsantrasyonları sürekli olarak dalgalanır. F-aktinin montajı ve sökülmesi düzenli olarak "aktin sırtı frezeleme" olarak bilinir. Bu işlemde, G-aktin alt birimleri esas olarak filamentli polimerin "dikenli ucuna" eklenir. Bu son ikisini de daha fazla kanıtlıyor termodinamik olarak G-aktin ilavesi için tercih edilir ve aynı zamanda kinetik olarak dinamik.[4] Aynı zamanda, daha eski G-aktin monomerleri, mikrofilamanın sivri ucundan "düşer". F-aktin polimerin "sivri ucunda" aktin monomerleri, ADP, hangi ayrışır polimerin "dikenli ucunda" bulunan ATP'ye bağlı aktinden daha kolay ve hızlı. Bu nedenle, yüksek konsantrasyonlarda serbest aktin alt birimlerinin bulunduğu ortamlarda, "dikenli uçta" filamentli büyüme "sivri uçtan" ​​daha büyük kalır. Bu "sırt frezeleme", esasen aktin yeniden modelleme sürecinin basitleştirilmiş bir açıklaması olarak mevcuttur.[2]

Aktin yeniden modelleme döngüsü

Hücre yüzeyi (kortikal) aktin yeniden modellemesi, her adımın doğrudan bir telefon sinyali mekanizma. Döngü boyunca aktin bir monomer olarak başlar, bağlanma yardımıyla bir polimere uzar. aktin bağlayıcı proteinler ve yeniden bir monomere dönüşür, böylece yeniden modelleme döngüsü yeniden başlayabilir.[1][5] Aktin yeniden şekillenmesinin dinamik işlevi, hücre şekli, yapısı ve davranışının muazzam değişkenliği ile doğrudan ilişkilidir.

İnsan prostatında bulunan bir yarayı kapatmak için aktin yeniden modellemesi şeklinde hücre iskeletinin yeniden düzenlenmesi ve hücre hareketliliği.

Başlatma

Aktin filaman uzamasının nerede ve ne zaman meydana geleceğini nihai olarak belirleyen bir dizi farklı olası mekanizmadan oluşur. Dikenli ucun kapatılmasını içeren mekanizmada, yayılma aktin-monomer sekestrasyon proteinlerine bağlı alt birimlerin düzenlenmiş aktin polimerizasyonu kontrol başlangıcı. Timozin ve Profilin her ikisi de kendiliğinden olanı sınırlama yeteneğini koruyan aktin-monomer ayıran proteinler olarak bulunur çekirdeklenme meydana gelmemesi, dolayısıyla aktin yeniden modelleme sürecini durdurması ve döngüyü ilk aşamasına geri döndürmesi.[6] Ek olarak, hücre, bilinen tüm "dikenli uç" kapaklarının çıkarılmasına yardımcı olmak için polifosfoinosititleri kullanır. proteinler.[1]

Olası Mekanizmalar:

Uzama

Kolaylaştırılmış in vivo polimerizasyon destekleyicileri ve dikenli uçlu kapatıcı proteinler ile. Uzama fazı, kısa, F-aktin polimerlerinin konsantrasyonu dengede olduğundan önemli ölçüde daha büyük olduğunda başlar. Bu noktada, her iki uç da yeni monomerlerin eklenmesini kabul eder (esasen "dikenli uçta" olmasına rağmen) ve aktin mikrofilamenti uzar.[4]

Sonlandırma

Polifosfoinosititlerin degradasyonunu ve "dikenli uç" başlık proteinleri Hsp70 ve CapZ'nin yeniden aktivasyonunu içerir, böylece dikenli uç kapatmayı yeniden başlatır ve uzamayı büyük ölçüde azaltır. Aktif kapaklama proteinlerinin varlığına rağmen, bazı inhibitörler profil, Forminler, ENA ve VASP uzamayı teşvik edin.[6] Bu inhibitörler, çeşitli farklı yöntemlerde işlev görebilir, ancak çoğu, alt birim depolimerizasyonunun inhibisyonunu ve aktin depolimerize edici aktin bağlayıcı proteinleri kullanır.[1]

Dallanma büyütme

F-aktin mevcut taraflarından yeni aktin mikrofilamanlarının çekirdeklenmesinden oluşur. Hücre, 70 ° açıyla mevcut polimerlere geçici olarak bağlanmak için Arp2 / 3 kompleksini kullanır. Arp2 / 3 kompleksi daha sonra, hücre iskeleti değişiklikleri yoluyla hücre içi yeniden organizasyon için gerekli olduğunu kanıtlayan filamentli bir dal halinde uzar.[7] Altyapıdaki bu değişiklik, hücre şeklini ve davranışını değiştirebilir ve genellikle taşıma için kullanılır. veziküller, patojenler veya diğer ilgili yapılar.[1]

Aktin filament çapraz bağlama

Aktin filament ağının genel stabilizasyonuyla sonuçlanır. Hücre kullanır çapraz bağlama proteinler, bağlanma ağı içinde farklı stabilite yollarını gerçekleştirmek için çeşitli boyutlardadır. Scruin gibi nispeten küçük AKB'ler, Fimbrin, ve espin aktin filaman demetlerini katılaştırarak işlev görür.[1] Teşvikinde filaman işlevi gibi bobin benzeri nitelikler sergileyen daha büyük ABP'ler dikey organizasyon. Bir bütün olarak, aktin çapraz bağlama, hücrenin sinyal iletimini taşıyabileceği bir çerçeve sağlar. ara maddeler aktin yeniden modelleme döngüsü içindeki diğer adımlar için gereklidir.[3]

Aktin filament daralması ve kargo motoru

Aktin filaman ağının çevresel koşullara tepki verme ve çeşitli vesikül biçimleri ve sinyal trafiği yoluyla yanıt verme yeteneğini temsil eder. En yaygın olarak, miyozin protein, hücre boyunca hücresel "yüke" eşlik eden bir "motor" olarak mevcuttur. Miyozin, öncelikle Miyozin II aktin filamentleri arasında büzülme kuvvetlerinin oluşması için de gereklidir.[1]

Aktin ağına membran bağlanması

Aktin-ortogonal ağın hücre zarına bağlanması, hücrenin hareketi, şekli ve mekanik işlevi için gerekli olduğunu kanıtlar. Bir hücrenin dinamik doğası, aktin-filaman ağının çevresel ve iç işaretlerden kaynaklanan büzülme kuvvetlerine yanıt verme yeteneği ile doğrudan ilişkili kalır.[4]

Aktin filament sökme

Aktin filamanlarının iç içe geçmesiyle hareketsizleştirme, iki farklı ABP ailesinden kaynaklanır. Gelsolin protein ailesinin aktin filamentlerinin bozulmasında en etkili olduğuna inanılmaktadır ve "güçlü bir ayırıcı protein" olarak kabul edilmektedir. Bu proteinler, Ca2 + 'daki bir artışa tepki verir ve yakın zamanda kopan F-aktinin "dikenli ucunu" kapatır.[7] Artan Ca2 + seviyesi, çapraz bağlama proteinlerinin bağlanmasına müdahale ederek aktin-filaman ağını da dengesizleştirebilir.[6] ADF /Kofilin protein ailesi ayrıca aktin ağlarının zayıf kesilmesi yoluyla şiddetli aktin-filaman ağlarına hizmet eder. Bu zayıf ayırma biçimi, "dikenli uçları" sıkıca kapatmaz, ancak aktin monomerlerinin ayrılmasına ve dolayısıyla F-aktinin ayrılmasına izin verir.[3]

Spontan çekirdeklenmeyi önleyen monomer sekestrasyonu

Aktin yeniden modelleme döngüsünde devir noktası olarak bulunur. Proteinler timozin ve profil yeni aktin trimerlerinde kendiliğinden çekirdeklenmeyi önler. Bu proteinlerin yokluğu veya inhibisyonu, hücrenin aktin yeniden modelleme döngüsünü başlatma ve uzatılmış F-aktin üretme kabiliyetiyle sonuçlanır.[1]

Ayrıca bakınız

Referanslar

  1. ^ a b c d e f g h ben j k Thomas P. Stossel; Gabriel Fenteany; John H. Hartwig (2006). "Hücre yüzeyi aktin yeniden modellemesi" (PDF). Hücre Bilimi Dergisi. 119 (Pt 16): 3261–3264. doi:10.1242 / jcs.02994. PMID  16899816. S2CID  30606964. Arşivlenen orijinal (PDF) 2010-06-18 tarihinde.
  2. ^ a b c d Amon; Berk; Bretscher; Kaiser; Krieger; Lodish; Ploegh; Scott (2013). Moleküler Hücre Biyolojisi (Yedinci baskı). New York: W.H Freeman ve Şirketi. s. 775–815. ISBN  978-1-4292-3413-9.
  3. ^ a b c d Begg, DA; Rodewald, R; Rebhun, LI (1 Aralık 1978). "Aktin filaman polaritesinin ince kesitlerde görselleştirilmesi. Membranla ilişkili filamanların tekdüze polaritesi için kanıt". Hücre Biyolojisi Dergisi. 79 (3): 846–852. doi:10.1083 / jcb.79.3.846. PMC  2110270. PMID  569662.
  4. ^ a b c Kuhn, JR; Pollard, TD (Şubat 2005). "Toplam İç Yansıma Floresan Mikroskobu ile Aktin Filament Polimerizasyonunun Gerçek Zamanlı Ölçümleri". Biyofizik Dergisi. 88 (2): 1387–1402. Bibcode:2005BpJ .... 88.1387K. doi:10.1529 / biophysj.104.047399. PMC  1305141. PMID  15556992.
  5. ^ Rottner, Klemens; Stradal, Theresia E.B. (2011). "Hücre hareketliliğinde aktin dinamikleri ve devir". Hücre Biyolojisinde Güncel Görüş. 23 (5): 569–578. doi:10.1016 / j.ceb.2011.07.003. PMID  21807492.
  6. ^ a b c Nicholson-Dykstra, S; Higgs, HN; Harris, ES (10 Mayıs 2005). "Aktin Dinamikleri: Dendritik Dallardan Büyüme". Güncel Biyoloji. 15 (9): R346 – R357. doi:10.1016 / j.cub.2005.04.029. PMID  15886095. S2CID  16997184.
  7. ^ a b Kalwat, MA; Thurmond, DC (23 Ağustos 2013). "Pankreas adacık β hücrelerinde glikoz kaynaklı F-aktin yeniden şekillenmesinin sinyal mekanizmaları". Deneysel ve Moleküler Tıp. 45 (37): e37. doi:10.1038 / emm.2013.73. PMC  3789261. PMID  23969997.