Hemorajik septisemi - Hemorrhagic septicemia

Bu makale, memelilerde görülen bakteriyel bir hastalık hakkındadır. Viral balık hastalığı için bkz. Viral hemorajik septisemi.

Hemorajik septisemi ekonomik açıdan en önemli olanlardan biridir pastörellozlar.[1][2] Sığır ve mandalardaki hemorajik septiseminin daha önce iki serotipten biri ile ilişkili olduğu biliniyordu. P. multocida: Carter-Heddleston sistemine göre Asya B: 2 ve Afrika E: 2 veya Namioka-Carter sistemini kullanarak 6: B ve 6: E.[2]

Hastalık başlıca sığır ve mandalarda görülür.[2] ama aynı zamanda rapor edildi keçiler (Capra aegagrus hircus),[3][4][5] Afrika manda (Syncerus nanus ),[6] develer[7] atlar ve eşekler (Equus africanus asinus ),[8] serogrup B ile enfekte domuzlarda,[3][9][10] ve vahşi filler (Elephas maximus).[11][12][13] Serotip B: 1 ve B: 3,4, antilopta septisemik bir hastalığa neden olmuştur (Antilocapra americana ) ve geyik (Cervus canadensis ), sırasıyla. Serotip B: 4, bizondaki hastalıkla ilişkilendirilmiştir (Bizon bizonu ).[14]

E: 2 ve B: 2 serotipleri, sırasıyla Afrika ve Asya'daki HS salgınları ile ilişkilendirilmiştir. Serotip E: 2, Senegal, Mali, Gine, Fildişi Sahili, Nijerya, Kamerun, Orta Afrika Cumhuriyeti ve Zambiya'da rapor edilmiştir.[2][15] Bununla birlikte, şu anda Afrika'daki salgınları serotip E: 2 ile ilişkilendirmek yanlıştır, çünkü Afrika'daki birçok HS salgını şu anda serogrup B ile ilişkilendirilmiştir.[16] Aynı şekilde, serogrup E, Asya'daki salgınlarla ilişkilendirilmiştir.[16] Örneğin Kamerun'da bir "Asya serotipi" (B: 2) kaydı rapor edildi.[17] Bazı raporlar, serotip B: 2'nin bazı Doğu Afrika ülkelerinde mevcut olabileceğini göstermiştir.[18] Hem serogrup B hem de E Mısır ve Sudan'da rapor edilmiştir.[19]Doğal enfeksiyon yolları soluma ve / veya yutmadır.[2] Deneysel aktarım, intranazal aerosol sprey veya oral ıslatma kullanılarak başarılı olmuştur.[2] Subkutan aşılama deneysel olarak kullanıldığında, hastalığın hızlı başlangıcı, daha kısa bir klinik seyir ve daha uzun hastalık seyri ile karşılaştırıldığında daha az belirgin patolojik lezyonlar ve daha derin oral ıslanma lezyonları ve aerosollerin neden olduğu intranazal enfeksiyon ile sonuçlanır.[20]

HS bir coğrafi bölgeye ilk kez tanıtıldığında, morbidite ve mortalite oranları yüksekti,[21] Hastalığın çok erken evrelerinde tedavi edilmediği sürece% 100'e yaklaşıyor.[18]

Klinik işaretler

Sığır ve bufalolarda HS için çok çeşitli klinik belirtiler tanımlanmıştır.[2] 4-10 aylık manda buzağıları için kuluçka dönemleri (maruziyet ile gözlemlenebilir hastalık arasındaki süre) enfeksiyon yoluna göre değişir.[20] İnkübasyon süresi subkutan enfeksiyon, oral enfeksiyon ve doğal maruziyet için sırasıyla 12-14 saat, yaklaşık 30 saat ve 46-80 saattir.

Hastalığın klinik seyrinin süresinde değişkenlik vardır. Deneysel subkutan enfeksiyon durumunda, klinik seyir sadece birkaç saat sürerken, oral enfeksiyonu takiben 2-5 gün ve doğal olarak enfekte hayvanlara maruz kalan bufalo ve sığırlarda devam etti.[20] Ayrıca saha gözlemlerinden akut ve akut vakaların klinik seyrinin sırasıyla 4-12 saat ve 2-3 gün olduğu kaydedilmiştir.[22]

Genellikle manda ve sığırlarda hastalığın ilerlemesi üç aşamaya ayrılır. Birinci evre ateş, 40–41 ° C (104–106 ° F) rektal sıcaklık, iştahsızlık ve depresyon ile karakterizedir. İkinci aşama, artan solunum hızı (40-50 / dakika), yorucu solunum, temiz burun akıntısı (hastalık ilerledikçe opak ve mukopürülan hale dönüşür), pektoral (göğüs) bölgeye ve hatta ön ayaklara yayılan submandibuler ödem ile tipiktir. . Son olarak, üçüncü aşamada tipik olarak yatma, devam eden akut solunum sıkıntısı ve terminal septisemi vardır.[23] Hastalığın seyri kısa olduğunda üç evre çakışır. Genel olarak, bufaloların sığırlara göre daha kısa süreli akut bir hastalık başlangıcı vardır.[24]

Patoloji ve patogenez

Otopsi muayenesinde (otopsi ), en belirgin brüt lezyon submandibuler ve pektoral (göğüs) bölgelerdeki subkütan ödemdir.[20] Peteşiyal kanamalar deri altından ve göğüs boşluğunda bulunur. Ek olarak, akciğerde tıkanıklık ve çeşitli derecelerde konsolidasyon meydana gelebilir.[20] 24-36 saat içinde ölen hayvanlarda kalpte çok az peteşiyal kanama ve genel akciğer tıkanıklığı olurken, 72 saat sonra ölen hayvanlarda peteşiyal ve ekimotik kanamalar daha belirgindi ve akciğer konsolidasyonu daha kapsamlıdır.[25]

Teşhis

Kan yayması ve Klinik Bulgulara Dayalı Teşhis.

Yönetim

Sülfadimadin 100 ml ağızdan ve enjeksiyon oksitetrasiklin 3 gün sürekli olarak 40 ml.

Epidemiyoloji

HS'nin küresel dağılımını üç faktör etkiler: iklim koşulları, hayvancılık uygulamaları ve hayvan türleri.[26] Örneğin, 1981'de Sri Lanka, farklı tarımsal bölgelere ve farklı hayvancılık uygulamalarına sahip olduğu için farklı dağıtım modellerine iyi bir örnekti. Sonuç olarak, Sri Lanka, HS için ayrı endemik ve endemik olmayan alanlara sahipti.[2] Hastalık, tepelerin baskın olduğu yerlerde neredeyse yoktu. Burada iklim koşulları ılıman ve ılıman süt ırkları da yetiştiriliyordu. Bunun aksine, mevsimsel olarak şiddetli yağışların ve yerli sığır, manda ve zebu sığırlarının olduğu daha sıcak kuru ovalarda hastalık endemikti. Bu uç noktalar arasında topografya, iklim ve hayvanların bulunduğu bölgelerde ara sıra ara sıra salgınlar meydana geldi.[2]

Genel olarak, Güney Asya, HS'nin en yüksek prevalans ve insidansına sahip alandır.[7] Bu, mevsimler arasında hava koşullarında meydana gelen radikal değişikliklere, mevsimsel yem kıtlığından kaynaklanan hayvanların zayıflamasına ve hayvanların yaptığı işin baskılarına, örn. taslak hayvanlar.[27] Hastalık daha az ölçüde Orta Doğu ve Afrika'da da ortaya çıkar. Hazırlık koşulları, Güney Asya'daki kadar net bir şekilde tanımlanmamıştır.[27]

1974-1986 arasında Hindistan'da HS, mandalarda ve sığırlarda bulaşıcı hastalıkların en yüksek ölüm oranından sorumluydu ve aynı hayvanlarda morbidite oranında ikinci sırada yer aldı. İle karşılaştırıldığında ayak ve ağız hastalığı, sığır vebası, şarbon ve siyah bacak[28] HS, bu beş endemik hastalığa bağlı ölümlerin% 58,7'sini oluşturmuştur.[28][29]

Hemorajik septisemi, Pakistan'da sığır ve mandaların en önemli bakteriyel hastalığıdır.[30] Pakistan'da ekonomik önemi büyük bir hastalıktır. Yalnızca Punjab eyaletinde, HS'ye bağlı mali kayıpların 1996 yılında 2,17 milyar Pakistan rupisinin (58 milyon ABD dolarına eşdeğer) üzerinde olduğu tahmin ediliyordu.[31][32] Çiftçilerin Karaçi'de yapılan katılımcı bir hastalık sürveyansındaki (PDS) görüşlerine göre, HS, şap hastalığından (FMD) daha önemlidir ve bu, yüksek ölüm oranı ve HS'nin daha büyük ekonomik etkisinden kaynaklanmaktadır.[33]

Ayrıca bakınız

  • Sepsis (kanda mikroorganizmaların varlığı)

Referanslar

  1. ^ De Alwis MCL (1999) Hemorajik septisemi. Canberra: Avustralya Uluslararası Tarımsal Araştırma Merkezi. sayfa 11–24.
  2. ^ a b c d e f g h ben Carter GR ve De Alwis MCL (1989) Hemorajik septisemi. İçinde: C. Adlam ve J. M. Rutter, editörler. Pasteurella ve Pasteurellosis. Academic Press, Londra. s. 131–160.
  3. ^ a b FAO (1959) Hemorajik septisemi üzerine FAO toplantısının raporu. Manila, Filipinler.
  4. ^ FAO (1979). İçinde: FAO, editör editörler. Üçüncü uluslararası hemorajik septisemi çalıştayı bildirileri. Colombo, Sri Lanka: FAO-APHCA.
  5. ^ FAO (1991). Hemorajik septisemi üzerine dördüncü uluslararası çalıştayın bildirileri. Kandy, Sri Lanka: FAO-APHCA Yayını No. 1991/13.
  6. ^ Kasali OB (1972) Bir Afrika bufalosunda hemorajik septisemi vakası (Syncerus nanus ). Bull Epizoot Dis Afr 20: 203-204.
  7. ^ a b Bain RVS, De Alwis MCL, Carter GR ve Gupta BK (1982) Hemorajik septisemi. FAO hayvan üretimi ve sağlık kağıdı No 33. Roma.
  8. ^ Pavri KM ve Apte VH (1967) İzolasyonu Pasteurella multocida Hindistan'daki ölümcül bir at ve eşek hastalığından. Vet Rec 80: 437-439.
  9. ^ Awad FI, Salem AA ve Fayed AA (1976) Pasteurella multocida tip I ile deneysel olarak enfekte olmuş hayvanlarda gözlemlenen klinik belirtiler üzerine çalışmalar Mısır Veteriner Bilimleri Dergisi 13: 53-56.
  10. ^ Pillai AGR, Katiyar AK, Awadhiya RP ve Vegad JL (1986) Domuzlarda pastörelloz salgını. Indian Vet J 63: 527-529.
  11. ^ De Alwis MCL ve Thambithurai V (1965) Seylan'da vahşi bir filde hemorajik septisemi vakası. Seylan Veteriner Dergisi 13: 17-19.
  12. ^ De Alwis MCL (1982) Pasteurella multocida serotip 6: B bir filden. Sri Lanka Veteriner Dergisi 30: 28.
  13. ^ Wickremasuriya UGJS ve Kendaragama KMT (1982) Vahşi bir filde hemorajik septisemi vakası. Sri Lanka Veteriner Dergisi 30: 34.
  14. ^ Rimler RB (1993) Hemorajik septiseminin serolojisi ve virülansı Pasteurella multocida evcil ve vahşi geviş getiren hayvanlardan izole edilmiştir. İçinde: B. E. Patten, T. L. Spencer, R. B. Johnson, D. Hoffmann ve L. Lehane, editörler. Üretim hayvanlarında pastörelloz, 10–13 Ağustos 1992'de Bali, Endonezya'da düzenlenen uluslararası bir çalıştay. ACIAR Bildirileri No. 43. s. 44–46.
  15. ^ Francis BKT, Schels HF ve Carter GR (1980) Zambiya'da hemorajik septisemiyle ilişkili Tip E Pasteurella multocida. Vet Rec 107: 135.
  16. ^ a b Dziva F, Muhairwa AP, Christensen H ve Bisgaard M (2008) Pasteurella multocida ile ilişkili hastalıkları araştırmak için teşhis ve tipleme seçenekleri. Vet Microbiol 128: 1-22.
  17. ^ Martrenchar A (1993) Kamerun'da hemorajik septisemi. Vet Rec 133: 25-26.
  18. ^ a b De Alwis MCL (1999) Hemorajik septisemi. Canberra: Avustralya Uluslararası Tarımsal Araştırma Merkezi. s. 33–42.
  19. ^ Shigidi MT ve Mustafa AA (1979) Sundan'da sığırlardan izole edilen Pasteurella multocida üzerinde biyokimyasal ve serolojik çalışmalar. Cornell Vet 69: 77-84.
  20. ^ a b c d e De Alwis MCL (1999) Hemorajik septisemi. Canberra: Avustralya Uluslararası Tarımsal Araştırma Merkezi. s. 25–32.
  21. ^ De Alwis MCL ve Vipulasiri AA (1980) Sri Lanka'da hemorajik septiseminin epizootiolojik bir çalışması. Seylan Veteriner Dergisi 28: 24-35.
  22. ^ Saharee AA ve Salim N (1991) Malezya'da sığır ve mandalarda hemorajik septiseminin epidemiyolojisi. FAO. s. 109–112.
  23. ^ Horadagoda NU, De Alwis MCL, Wijewardana TG, Belak K, Gomis AIU, ve diğerleri. (1991) Bufalo buzağılarında deneysel hemorajik septisemi. FAO. sayfa 73–80.
  24. ^ Graydon RJ, Patten BE ve Hamid H (1993) Sığır ve bufaloda deneysel hemorajik septiseminin patolojisi. İçinde: B. E. Patten, T. L. Spencer, R. B. Johnson, D. Hoffmann ve L. Lehane, editörler. Üretim hayvanlarında pastörelloz, 10–13 Ağustos 1992'de Bali, Endonezya'da düzenlenen uluslararası bir atölye çalışması. Canberra: ACIAR Bildirileri No. 43. s. 105–107.
  25. ^ De Alwis MCL, Jayasekera MU ve Balasunderam P (1975) Pasteurella multocida serotip 6: B ile ilişkili bufalo buzağılarında pnömonik pastörelloz. Seylan Veteriner Dergisi 23: 58-60.
  26. ^ De Alwis MCL (1993) Sri Lanka. İçinde: B. E. Patten, T. L. Spencer, R. B. Johnson, D. Hoffmann ve L. Lehane, editörler. Üretim hayvanlarında pastörelloz, 10–13 Ağustos 1992'de Bali, Endonezya'da düzenlenen uluslararası bir çalıştay. Canberra: ACIAR Bildirileri No. 43. s. 243–245.
  27. ^ a b De Alwis MCL (1999) Hemorajik septisemi. Canberra: Avustralya Uluslararası Tarımsal Araştırma Merkezi. s. 1–10.
  28. ^ a b Dutta J, Rathore BS, Mullick SG, Singh R ve Sharma GC (1990) Hindistan'da hemorajik septisemi oluşumu üzerine epidemiyolojik çalışmalar. Indian Vet J 67: 893-899.
  29. ^ Benkirane A ve De Alwis MCL (2002) Hemorajik septisemi, Asya'da önemi, önlenmesi ve kontrolü. Vet Med (Praha) 47: 234–240.
  30. ^ Munir R, Akhtar S ve Afzal MM (1994) Bufalo buzağılarında Pasteurella multocida'ya karşı üç yağ-adjuvan aşının değerlendirilmesi. Revue Scientifique Technique Office International des Epizooties 13: 837-843.
  31. ^ Anonim (1996) Ekonomik analiz ve araştırma planlaması: Epidemiyoloji, Pencap, 1994. Pakistan hayvancılık ve süt ürünleri geliştirme planlama ve değerlendirme departmanı müdürlüğü, Pencap.
  32. ^ Imran M, Irshad M, Shahid MA ve Ashraf M (2007) Faysalabad bölgesindeki sağlıklı sığır ve bufalolarda Pasteurella multocida'nın taşıyıcı durumu üzerine çalışmalar. International Journal of Dairy Science 2: 398-400.
  33. ^ Ali SN, Asif M, Rehman A, Jat LA, Ali Q, vd. (2006) Pakistan'ın Karaçi Bölgesinde Hayvancılık Hastalıklarının Katılımcı Gözetimi. Uluslararası Tarım ve Biyoloji Dergisi 8: 652-656.

Dış bağlantılar