Nanoenjeksiyon - Nanoinjection

Nanoenjeksiyon iletmek için mikroskobik bir mızrak ve elektrik kuvvetleri kullanma işlemidir DNA bir hücreye. Daha etkili olduğu iddia ediliyor mikroenjeksiyon çünkü kullanılan mızrak a'dan on kat daha küçüktür. mikropipet ve yöntem sıvı kullanmaz. Nano enjektör mekanizması, bir pH tamponlu çözelti. Daha sonra, mızrağa, yüzeyinde negatif yüklü DNA biriktiren pozitif bir elektrik yükü uygulanır. Nano enjektör mekanizması daha sonra zigotik zarlar ve hücre içinde biriken DNA'yı serbest bırakan mızraka negatif bir yük uygulanır. Mızrak, hücrenin hem girişinde hem de çıkışında sabit bir yükseklik sağlamak için gereklidir.[1]

Nanoenjeksiyon, uzun vadede% 92 hücre canlılığı ile sonuçlanır. elektroforetik 100 nm çapında enjeksiyon işlemi nanopipet nanoenjeksiyon pipetinin tipik çapı.[2]

Tek hücreli transfeksiyonlar, neredeyse her türlü memeli DNA'nın salınması için bir giriş oluşturan bir şırınga kullanarak hücreyi diğerine aktarın. Bir nano iğne, mekanik vektör olarak kullanılır. plazmid DNA. Bu denir Atomik kuvvet mikroskopisi veya AFM. Amaç, hücreye kalıcı hasara neden olmamak veya hücre içi sıvının hücresel sızıntısına neden olmamaktır. AFM, DNA'nın hassas konumlandırılmasına izin verdiği için tercih edilen bir araçtır. Bu önemlidir çünkü ucun uç kısmına girmesine izin verir. sitozol, hücreye canlı DNA transferi için kritik olan.[3]

Nanoenjeksiyon kullanma nedenleri arasında genetik materyalin yerleştirilmesi yer alır. genetik şifre bir zigot. Bu yöntem, gen işlevlerini anlamak ve geliştirmek için kritik bir adımdır.

Nanoenjeksiyon ayrıca hayvanların araştırmalarına yardımcı olmak için genetik olarak modifiye etmek için kullanılır. kanser, Alzheimer'ın hastalık ve diyabet.[2]

Yapılışı

Mızrak kullanılarak yapılır polyMUMPs fabrikasyon teknolojisi. Altın bir katman ve sırasıyla 2.0 ve 1.5 μm kalınlığında iki yapısal katman oluşturur. Prototip oluşturmak için bir platform olarak iyi olmasını sağlayan basit bir süreçtir. polisilikon MEMS düşük ticari imalat maliyetine sahip cihazlar. Mızrak, 150 nm uç genişliğine sahip 2 μm kalınlığında, sağlam, konik bir gövdeye sahiptir. Koniklik, maksimum 11 μm genişliğe ulaşan 7,9 ° 'ye ayarlanmıştır. Oldukça katlanmış iki elektrik bağlantısı, mızrak ve iki eşdeğer bağ pedi arasında bir elektrik yolu sağlar ve bağ pedlerinden birini entegre devre çip taşıyıcısının pimine bağlayan altın bir tel ile. Taşıyıcı daha sonra özel olarak yapılmış bir elektrik prizine yerleştirilir.[4]

Yumurtaların döllenmesi durumunda, mızrak, bir değişim noktalı paralel kılavuzlu altı çubuklu mekanizma ve uyumlu bir paralel kılavuzlu katlanmış kirişli süspansiyondan oluşan bir kinematik mekanizmaya dahil edilir.

Teknikler

Elektroforetik Enjeksiyon

Elektroforetik Enjeksiyon, nanoenjeksiyonun en yaygın şekli olmaya devam etmektedir. Diğer yöntemlerde olduğu gibi mikroenjeksiyondan on kat daha küçük bir mızrak kullanılmaktadır. Mızrak enjeksiyon için hazırlanırken, negatif yüklü DNA'yı ucuna çekerek pozitif bir yük uygulanır. Mızrak hücre içinde istenen derinliğe ulaştıktan sonra, yük tersine çevrilerek DNA'yı hücreye iter.[1] Tipik enjeksiyon voltajlar ± 20 V'dir, ancak 50-100 mV kadar düşük olabilir.

Difüzyon

Enjeksiyon cihazının bir merkez armatürüne, mızrakları hücre zarlarından geçirerek ve sitoplazma veya çekirdek Yapışık hücrelerin sayısı. Kuvvetin büyüklüğü, manuel kuvvetin bir tahminini elde etmek için az sayıda enjeksiyon üzerinde bir kuvvet plakası kullanılarak ölçülür. Kuvvet plakası, enjeksiyon çipine fiilen uygulanan kuvveti ölçmek için düzenlenmiştir (yani, destek yayının sertliği dahil değildir). Kuvvet beş saniye tutulduktan sonra kuvvet serbest bırakılır ve enjeksiyon cihazı hücreden çıkarılır. Difüzyon protokolü, enjeksiyon sürecindeki diğer varyasyonlarla karşılaştırma için veri sundu.[5]

Başvurular

Belirli partikülleri hücrelere vererek, hastalıklar tedavi edilebilir ve hatta iyileştirilebilir. Gen tedavisi Muhtemelen hücrelere yabancı madde verilmesinin en yaygın alanıdır ve insan genetik hastalıklarının iyileştirilmesinde büyük etkileri vardır.

Örneğin, son zamanlarda yapılan bir deneyde, doğuştan renk körü iki maymuna gen tedavisi tedavisi verildi. Gen terapisinin bir sonucu olarak, her iki hayvanın da hiçbir yan etkisi olmaksızın renk görüşleri düzeldi. Geleneksel olarak gen terapisi iki kategoriye ayrılmıştır: biyolojik (viral) vektörler ve kimyasal veya fiziksel (nonviral) yaklaşımlar. Viral vektörler şu anda DNA'yı hücrelere iletmede en etkili yaklaşım olsa da, bazı sınırlamaları vardır. immünojenite, toksisite ve sınırlı DNA taşıma kapasitesi.[5]

Başarılı gen terapisi için kritik olan faktörlerden biri, verimli dağıtım sistemlerinin geliştirilmesidir. Viral ve viral olmayan vektörler dahil olmak üzere gen transfer teknolojisinde ilerlemeler kaydedilmiş olmasına rağmen, ideal bir vektör sistemi henüz inşa edilmemiştir.[6]

Alternatifler

Mikroenjeksiyon, nanoenjeksiyonun öncülüdür. Hala biyolojik araştırmada kullanılan mikroenjeksiyon, canlı olmayan hücrelerin incelenmesinde veya hücre canlılığının önemli olmadığı durumlarda faydalıdır. 0.5-1.0 mikrometre çapında bir cam pipet kullanarak hücrenin zarı delinme üzerine hasar görür. Nanoenjeksiyonun aksine, mikroenjeksiyon, basınç altında hücreye sürülen DNA dolu sıvıyı kullanır. Operatörün becerisi gibi faktörlere bağlı olarak, bu prosedüre giren hücrelerin hayatta kalma oranları% 56 kadar yüksek veya% 9 kadar düşük olabilir.[2]

Hücre gruplarını hedefleyen başka yöntemler mevcuttur, örneğin elektroporasyon. Bu yöntemler, belirli hücreleri hedefleyemez ve bu nedenle, etkinlik ve hücre yaşayabilirliğinin önemli olduğu yerlerde kullanılamaz.

Referanslar

  1. ^ a b Aten, Quentin T .; Jensen, Brian D .; Burnett, Sandra H .; Howell, Larry L. (2014). "Fare zigotlarına enjeksiyon için kendi kendini yeniden yapılandıran bir metamorfik nano enjektör". Bilimsel Aletlerin İncelenmesi. 85 (5): 055005. doi:10.1063/1.4872077. PMID  24880406.
  2. ^ a b c Simonis, Matthias; Hübner, Wolfgang; Wilking, Alice; Huser, Thomas; Simon Hennig (2017/01/25). "Elektroforetik nanoenjeksiyonu takiben ökaryotik hücrelerin hayatta kalma oranı". Bilimsel Raporlar. 7: 41277. doi:10.1038 / srep41277. ISSN  2045-2322. PMC  5264641. PMID  28120926.
  3. ^ Cuerrier, Charles M .; Lebel, Réjean; Grandbois, Michel (2007-04-13). "Plazmidle dekore edilmiş AFM probları kullanılarak tek hücre transfeksiyonu". Biyokimyasal ve Biyofiziksel Araştırma İletişimi. 355 (3): 632–636. doi:10.1016 / j.bbrc.2007.01.190. ISSN  0006-291X. PMID  17316557.
  4. ^ Aten, Q. T .; Jensen, B. D .; Burnett, S. H .; Howell, L. L. (Aralık 2011). "Mikromakineli Marpuç Kullanılarak DNA'nın Elektrostatik Birikimi ve Salınımı". Mikroelektromekanik Sistemler Dergisi. 20 (6): 1449–1461. doi:10.1109 / JMEMS.2011.2167658. ISSN  1057-7157.
  5. ^ a b Lindstrom, Zachary K .; Brewer, Steven J .; Ferguson, Melanie A .; Burnett, Sandra H .; Jensen, Brian D. (2014-10-03). "Bir Silikon Nanoenjeksiyon Lance Dizisi Kullanılarak Propidium İyodürün HeLa Hücrelerine Enjeksiyonu". Journal of Nanotechnology in Engineering and Medicine. 5 (2): 021008–021008–7. doi:10.1115/1.4028603. ISSN  1949-2944.
  6. ^ Mehierhumbert, S .; Guy, R. (2005-04-05). "Gen aktarımı için fiziksel yöntemler: Hücrelere gen dağıtım kinetiğini iyileştirme". Gelişmiş İlaç Teslimi İncelemeleri. 57 (5): 733–753. doi:10.1016 / j.addr.2004.12.007. ISSN  0169-409X.